|
|
|
Toma
de muestras para el Servicio de Microbiología |
|
|
NORMAS
GENERALES |
- Elegir el material
que refleje el proceso patológico.
- Evitar
contaminación con la flora del paciente.
- Obtener volumen
suficiente para observación microscópica y
cultivo.
- Obtener la muestra,
si es posible, antes de iniciar la terapia
antimicrobiana.
- Transportar la
muestra rápidamente al laboratorio.
|
|
HEMOCULTIVOS |
1.-
Recogida.
- Desinfectar zona
de extracción con alcohol 70% y después con
alcohol yodado o povidona yodada. Esperar 1
minuto.
- Desinfectar los
tapones de los frascos de hemocultivos con
alcohol 70%.
- Cada toma supone
2 frascos : uno aerobio y otro anaerobio.
- Extracción
deseable en picos febriles
- En general, 3
tomas espaciadas en 24 horas. En urgencia, 3
tomas cada 15 minutos, de venas diferentes. En
F.O.D., 6 tomas en 48 horas.
2.- Volumen de
la muestra.
- Adultos y niños
: 6-10 ml (3-5 ml por frasco).
- Neonatos : 2ml.
3.- Transporte :
envío al laboratorio lo antes posible.
4.-
Conservación : hasta su envio, mantener a
35-37ºC. si no es posible, a temperatura
ambiente. Nunca refrigerar ni congelar.
5.-
Observaciones :
- No son adecuadas
las extracciones a través de catéteres y
cánulas intravasculares.
- La relación
ideal sangre : caldo de cultivo es de 1:10, a
fin de diluir las sustancias bactericidas del
suero.
|
|
|
ORINA |
1.-
Recogida.
- Micción
espontánea.
- Limpieza de
genitales.
- Parte media de
la micción.
- Sondaje.
- Punción
suprapúbica.
- Si se utiliza
bolsa de plástico adhesiva, no se mantendrá
la misma más de 30 minutos.
- La primera orina
de la mañana es la más adecuada.
2.- Volumen de
la muestra : 5-10 ml.
3.- Transporte :
plazo no
superior a 1 hora.
4.-
Conservación : a 4ºC, un máximo de 24
horas.
5.-
Observaciones :
- Debe tenerse en
cuenta las frecuentes contaminaciones. En
general < 50000 colonias/ml de orina
y más de tres gérmenes encontrados indican
que la orina está contaminada.
- La
investigación de anaerobios debe hacerse en
orinas obtenidas por punción suprapúbica.
|
|
|
HECES |
1.-
Recogida :
- Heces
recién emitidas, eligiendo las zonas que
contengan sangre, moco o pus.
2.- Volumen de
la muestra.
- Heces formadas o
pastosas : al menos 2 g.
- Heces líquidas
: 5-10 ml.
3.- Transporte :
deben
enviarse en un período inferior a 30 minutos. Si
no es posible, se utilizará medio de transporte
que será facilitado por el Servicio de
Microbiología.
4.-
Conservación : las
heces preparadas con medio de transporte se
mantendrán en nevera (4ºC) hasta su envío, no
debiendo superar las 12-18 horas.
5.-
Observaciones :
- Son inadecuadas
las heces contaminadas con orina.
- La relación
ideal de medio de transporte y muestra es : 10
ml por gramo de heces.
|
|
|
ESPUTOS |
1.-
Recogida.
- Expectoración
voluntaria profunda.
- Procedimientos
especiales.
- Mejor muestra,
la matutina.
- Recipiente
estéril.
2.- Volumen de
la muestra : 5-10 ml, si es posible.
3.- Transporte :
antes de 2 horas desde la obtención.
4.-
Conservación : en nevera (4ºC) hasta su
procesamiento.
5.-
Observaciones :
- Presencia de
células epiteliales en el esputo equivale a
contaminación faríngea.
- A todas las
muestras se les efectúa control de calidad
por observación microscópica.
|
|
|
HERIDAS,
QUEMADURAS, ULCERAS |
1.-
Recogida.
- Lavar
cuidadosamente la superficie de la lesión.
- Aspirar con
jeringa de la zona profunda. Si se realiza con
hisopo, cargarlo bien de material purulento de
la zona profunda siendo conveniente el envío
de dos hisopos.
2.- Volumen de
la muestra.
- Aspiración :
1-10 ml.
- Hisopo : la
máxima cantidad posible..
3.- Transporte :
antes de 2 horas.
4.-
Conservación : en caso de demora :
- Para aislamiento
de aerobios refrigerar (4ºC).
- Para aislamiento
de anaerobios enviar una segunda toma y
mantenerla a temperatura ambiente.
5.-
Observaciones : la recogida con hisopo no es
muy eficiente sobre todo si no lleva medio de
transporte. |
|
|
EXUDADOS |
1.-
Recogida.
- Nasal : hisopo
flexible de alginato o dacrón.
- Faríngeo :
hisopo convencional.
- Ótico : hisopo
de pequeño tamaño.
- Conjuntival :
hisopo alginato cálcico pequeño o dacrón.
- Vaginal : hisopo
alginato cálcico o dacrón.
- Uretral : hisopo
especial.
2.- Volumen de
la muestra : la máxima cantidad posible. Es
conveniente el envío de 2 hisopos.
3.- Transporte :
por regla general, debe ser inmediato.
4.-
Conservación : todos los hisopos pueden
mantenerse en medio de transporte a temperatura
ambiente, salvo los faríngeos que se conservarán
en refrigeración (4ºC).
5.-
Observaciones :
- Muestra
nasal está indicada para estudio de
portadores de S. aureus y estudio de B.
pertutis.
- En muestras
faríngeas, evitar el contacto del hisopo con
mucosa oral, lengua o úvula.
- Muestras óticas
se tomarán a través del otoscopio estéril o
procedimientos especiales.
- Muestra
conjuntival debe obtenerse antes de aplicar
anestésicos locales, colirios o
antibióticos.
- Muestras
vaginales y uretrales en medio de transporte,
se mantendrán a 35-37ºC.
- Muestras
uretrales deben tomarse, como mínimo, 1 hora
después de la última micción.
|
|
|
CATÉTERES |
1.-
Recogida.
- Desinfectar la
zona de piel correspondiente a la entrada del
catéter con alcohol 70%, después con alcohol
yodado o povidona yodada, esperar un minito.
Retirar el catéter con la máxima asepsia.
- Con pinzas y
tijeras estériles, cortar los 5 cm distales
del catéter que corresponden a la zona
intravascular.
- Introducirlo en
frasco estéril.
2.- Volumen de
la muestra : 5 cm de la porción más distal.
3.- Transporte :
envío antes de 30 minutos.
4.-
Conservación : mantener en nevera a (4ºC) el
menor tiempo posible.
5.-
Observaciones :
- Las sondas de
Foley no deben enviarse, salvo que se quiera
comprobar la esterilidad de las no utilizadas.
|
|
|
ABSCESOS |
1.-
Recogida.
- Desinfectar la
piel con alcohol 70%, después con alcohol
yodado o povidona yodada. Esperar un minuto.
2.- Volumen de
la muestra : 5-10 ml.
3.- Transporte :
inmediatamente, una vez se haya expulsado el aire
del interior de la jeringa y pinchado la aguja en
un tapón de goma estéril.
4.-
Conservación :
- Inyectar 1-5 ml
de la muestra en medio de transporte para
anaerobios, dejándolo a temperatura ambiente.
- Inyectar una
parte de la muestra en un frasco de
hemocultivo anaerobio y mantener a 35-37ºC o
a temperatura ambiente.
5.-
Observaciones :
- Aunque sea
posible el uso de hisopos, debe evitarse.
- Los tapones de
goma estéril los suministrará el Servicio de
Microbiología.
|
|
|
L.C.R. |
1.-
Recogida.
- Punción lumbar.
- Estricta
asepsia.
2.- Volumen de
la muestra : 1-10ml.
3.- Transporte :
en tubos estériles, antes de 30 minutos.
4.-
Conservación : si no es posible el envío,
debe hacerse :
- Mantener a 35-37ºC.
- Parte del L.C.R.
puede inyectarse en un frasco de hemocultivo y
mantener a 35-37ºC o a temperatura ambiente
de no disponer estufa.
- Nunca refrigerar
ni congelar.
|
|
|
SANGRE
(SEROLOGÍA) |
1.-
Recogida.
- Extraer sangre
periférica en tubo vacutainer de tapón rojo
(suero) o de tapón verde (plasma).
2.- Volumen de
la muestra : como mínimo 5 ml.
3.- Transporte :
tan pronto como
sea posible, en el tubo de extracción.
4.-
Conservación : en nevera (4ºC), evitando la
congelación.
5.-
Observaciones :
- E L.C.R. para el
estudio de antígenos y anticuerpos se
conservará en nevera y no en estufa (volumen
: 1-3 ml).
|
|
|
|